雄性SD大鼠40只(SPF级)，体质量190~210g，由北京维通利华实验动物公司提供，许可证号：SCXK(京)2002?0003;正常光照条件，自由摄取食水，驯养1周并进行10g/L蔗糖水摄取训练。禁水24h后，于第2天清晨8~9时测定1h的10g/L蔗糖水摄取量，计算摄取率，随后采用区组随机设计的方法，按10g/L蔗糖水摄取率划分区组，再按随机数字表法随机分为5组，每组8只。正常对照组群养，每天灌胃饮用水10mL/kg;慢性应激模型组(简称模型组)孤养，每天灌胃饮用水10mL/kg，并按程序施加造模刺激;慢性应激加四逆散组(简称四逆散组)每天灌胃剂量为5?6g/kg的四逆散悬浊液，并按程序施加造模刺激;慢性应激加归脾汤组(简称归脾汤组)：每天灌胃剂量为19?6g/kg的归脾汤悬浊液，并按程序施加造模刺激;慢性应激加温胆汤组(简称温胆汤组)：每天灌胃剂量为8?05g/kg的温胆汤悬浊液，并按程序施加造模刺激。普通饲料与饮用水在允许时可自由摄取。各组处理时间均为21d，每3d测定1次大鼠体质量，以调整灌胃药量。

1?3造模方法

[2]刺激方法包括：夹尾1min，水平振荡160次/min共30min，4℃冰水游泳5min，禁水24h，禁食24h，昼夜颠倒24h，45℃热环境5min。上述刺激每天1种，每种刺激各3次，随机安排，使动物不能预知次日的刺激。

1?4血清皮质酮测定

于末次刺激后次日，断头取血，4℃放置3h后，4℃离心15min(4000g)，分离血清，-40℃保存备测。检测方法按试剂盒说明书操作。

1?5蔗糖水摄取率测定

根据文献[6]的方法操作。在正式实验前，先对大鼠进行蔗糖水摄取训练，即先用10g/L蔗糖水和饮用水同时喂养48h，然后断水24h，于次日清晨8~9时再次同时给予大鼠自由饮用10g/L蔗糖水和饮用水共1h，分别记录摄取量，根据下列公式计算蔗糖水摄取率(p摄取)，并在实验的第7、14、21天各重复测量1次。

p摄取=V蔗糖水(V蔗糖水+V饮用水)×100%

1?6强迫游泳中静止时间测定

根据文献[7]的方法进行。于末次应激24h后，先进行适应性强迫游泳15min，即将大鼠放入内径20cm、高60cm的圆形透明玻璃缸中，缸中加温度(25±1)℃的温水，深约25cm，使大鼠在水中不能以后爪支撑身体、前爪攀附于缸壁，取出后用毛巾擦干放回笼中。每缸水仅使用1只大鼠。24h后再同样将大鼠放入水中，累计记录5min内大鼠在水中停止挣扎、呈漂浮状态的时间。每只大鼠仅进行1次实验，由两人同时观察记录，取平均值作为各大鼠强迫游泳静止时间的数据。

1?7统计学方法

采用SPSS13?0统计软件包进行随机区组设计的方差分析，组间两两比较的SNK?q检验。

2结果

2?1各组大鼠体质量及血清皮质酮的变化

表1结果显示，各组大鼠体质量均有增加，但增加量差异无显著性意义(P>0?05)。模型组大鼠血清皮质酮含量显著升高，与正常对照组比较差异有显著性意义(P<0?01)。四逆散组大鼠血清皮质酮含量显著低于模型组(P<0?05)，与正常对照组比较差异无显著性意义(P>0?05)。归脾汤组、温胆汤组与模型组比较差异均无显著性意义(P>0?05)。表1各组大鼠体质量增加量及血清皮质酮的变化比较(略)

2?2各组大鼠蔗糖水摄取率变化

表2结果显示，模型组大鼠蔗糖水摄取率显著降低，与正常对照组比较差异有显著性意义(P<0?05);四逆散组摄取率升高，与模型组比较差异有显著性意义 (P<0?05);归脾汤组、温胆汤组摄取率与模型组比较差异均无显著性意义(P>0?05)。表2各组大鼠蔗糖水摄取率与强迫游泳中静止时间比较(略)

2?3各组大鼠强迫游泳中静止时间的变化