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作者：陈敏敏，程海波，张颖，李友林，许惠琴

【摘要】 【目的】观察癌痛平对福尔马林致痛模型大鼠脊髓背角c?fos基因表达及P物质(SP)含量的影响。【方法】选用SD大鼠50只，随机分成5组：空白对照组，模型组，曲马多组(剂量为0?06g/kg)，癌痛平高、低剂量组(剂量分别为36、18g/kg);采用福尔马林右侧后爪掌心皮下注射法复制致痛模型，取脊髓L3~L5节段，采用免疫组化法观测各组大鼠脊髓背角浅层fos蛋白表达及SP含量。【结果】模型组大鼠脊髓背角浅层中fos免疫反应阳性神经元数目及SP免疫阳性反应物的D值均显著增加(P<0?01);癌痛平高剂量组可显著降低fos免疫反应阳性神经数目及SP免疫阳性反应物的D值(P<0?01)。【结论】癌痛平可能通过减少脊髓背角神经元对传入的伤害性刺激的反应发挥镇痛作用。

【关键词】 癌痛平/药理学;疼痛/中药疗法;脊髓/病理学;疾病模型，动物;大鼠

癌性疼痛是癌症患者最常见、且最难控制的症状，也是影响患者生活质量的重要因素。应用世界卫生组织(WHO)大力推广的“三阶梯药物止痛法”控制癌痛的方案，疗效虽然比较确切，但长期使用镇痛剂毒副作用大，成瘾性、依赖性强，并受患者耐受性的限制[1]。本课题在已完成的癌痛平治疗癌性疼痛的临床与实验研究基础上[2-3]，进一步对其作用机理进行更深入的研究，现报道如下。

1材料与方法

1?1动物成年清洁级SD大鼠，雌雄各半，体质量250～300g，由河南省实验动物中心提供， 生产许可证：SCXK(豫)2005?0001。

1?2 主要药物和试剂癌痛平由蚤休、鼠妇、制南星、制白附子、荜拔等组成，由南京中医药大学中医药研究院提供;盐酸曲马多片由石家庄制药集团有限公司提供(批号：031002);兔抗大鼠c?fos多克隆抗体、P物质(SP)免疫组化染色试剂盒均为武汉博士德生物技术有限公司产品;二氨基联苯胺(DAB)显色剂为福州迈新生物技术开发有限公司产品。

1?3 动物分组、用药和造模[4-5]SD大鼠50只，随机分为5组，每组10只，雌雄各半。空白对照组不做任何处理;模型组给予等容积蒸馏水;曲马多组给予曲马多0?06g/kg;癌痛平高、低剂量组分别给予癌痛平36、18g/kg。各组动物均以15mL/kg灌胃给药，给药1h后，用微量注射器抽取体积分数为5%福尔马林100μL注入大鼠右侧后爪掌心皮下复制福尔马林致痛模型。

1?4取材与切片注射福尔马林30min后以100mg/L水合氯醛500mg/kg腹腔注射麻醉大鼠，仰卧固定，快速开胸，暴露心脏，经左心室插管至升主动脉，剪开右心耳，进行心脏灌注;先以无菌生理盐水250mL快速冲去血液，至流出的液体变清亮为止，随后用含40g/L多聚甲醛的0?1mol/L磷酸盐缓冲液(PBS,pH7?4)先快后慢灌流固定约30min;打开脊柱，取脊髓L3～L5节段置于含40g/L多聚甲醛的PBS中进行保存;再将组织进行封蜡，常规石蜡切片，片厚5μm，选取结构完整者贴于多聚赖氨酸处理过的玻片上。

1?5免疫组织化学反应采用链霉亲合素—生物素酶复合物(SABC)法先将切片脱蜡至水，再置于体积分数为10%的过氧化氢中，室温孵育7min，蒸馏水漂洗3次，每次3min;然后将切片放入装有沸腾柠檬酸缓冲液(pH 6?0)的高压锅中，盖上锅盖，扣上压力阀，继续加热至喷气，开始计时，90s后将高压锅撤离热源，冷却5min后置自来水下流水降温，15min后打开高压锅盖，继续自然降温至室温，PBS(pH7?2～7?4)漂洗3次，每次3min;滴加体积分数5%牛血清白蛋白(BSA)封闭液，室温20min;甩去多余液体，不洗;滴加1∶100稀释的相应一抗，37℃、80min;PBS漂洗3次，每次3min;滴加生物素化二抗，室温孵育20min，PBS漂洗3次，每次3min;滴加试剂过氧化物酶，室温20min，PBS漂洗4次，每次5min;DAB显色，显微镜下控制显色时间，苏木素轻度复染，自来水充分冲洗，室温下避光干燥，常规酒精梯度脱水，二甲苯透明,中性树胶封片，阴性对照以PBS代替c?fos或SP抗体,其他步骤同上。

1?6图像观察与分析每只大鼠取切片3张，每组共30张切片，应用电子计算机图像分析技术对切片进行图像分析：将切片置于光镜下，经10×40倍显微镜将一幅图像由显微镜输入后显示在计算机监视屏幕上，选定目标区域，利用江苏捷达图像分析软件于10×20倍测定脊髓背角浅层(I、II层,Rexed分层法)fos样免疫反应(fos?like immunoreactive,FLI)阳性神经元(FLIN)细胞数或2个视场内SP免疫反应阳性纤维光密度(D)值。所有切片均在同一光强度下测定。